蛋白质组学

MCP2017-三角褐指藻脂肪酸代谢途径的乙酰化蛋白质组学分析

2. 乙酰化蛋白功能分析

对鉴定得到乙酰化修饰位点通过motif-x将位点上游和下游的六个侧位氨基酸频率与该模型中所有赖氨酸残基的频率进行了比较,发现17个显著富集的乙酰化位点基序,占81.5%。其中三个基序,Y,H或F在朝向C末端的+1位置上的富集,其中Y在+1上伴随着L在-1位置或L在+2/I在-1位置首次在植物中被识别(图2A)。通过热图分析(图2B)发现乙酰化肽的残基偏好在-1和+1位置为Y,在-1/+1/+2位置为F,在-1/+2位置为L,这些都与motif-x分析的先前结果一致。这些数据显示了一些氨基酸残基对三角褐指藻乙酰化的偏好。对赖氨酸乙酰化与乙酰化蛋白局部二级结构的关系进行二级结构分析。发现乙酰化位点在α-螺旋中的分布约为52.5%,在β-片状中的分布约为11.3%,在螺旋中的分布约为36.2%(图2C)。这一发现表明,赖氨酸乙酰化可能更倾向于在光合有机体的α-螺旋结构。

3. 重要酶乙酰化修饰WB验证

三角褐指藻通过II型脂肪酸合成途径合成脂肪酸。实验发现该途径7种酶发生乙酰化。包括关键第一限速酶ACCase,长链酰基辅酶a合成酶(LACS)等。之前研究表明LACS的ptACSL1ptACSL4有促进外源脂肪酸摄取的功能。本实验发现ptACSL1ptACSL4被大量的Lys乙酰化。WB确认ptACSL1ptACSL4的赖氨酸乙酰化(K407、K425、K321和K325),同时发现赖氨酸乙酰化的ptACSL1ptACSL4表现出不同于营养胁迫下序列特异性抗体识别的表达模式(图3)。

LACS定点突变的活性实验。将ptACSL1的位于AMP结合区的K407和K425分别突变为谷氨酰胺(K407Q,K425Q),谷氨酰胺(K407Q,K425Q)。酶活结果表明所有的定点突变都导致LACS活性下降(图4B)。通过大肠杆菌重组纯化K407-,K425-乙酰化,和未乙酰化的ptACSL1,酶活发现与未乙酰化的ptACSL1相比,K407和K425的乙酰化导致ptACSL1的LACS活性显著增加(图4C)。

Sirtuin是ptACSL1的一种常见的去乙酰化酶。纯化Sirtuin(ptSRT5)并于乙酰化的ptACSL1进行孵育,发现ptACSL1在NAD+存在下能有效地脱乙酰,而ptSRT3在同一反应体系中不能诱导ptACSL1脱乙酰(图4D)。如果添加烟酰胺(SIRT脱乙酰化酶家族的特异性抑制剂)可完全抑制ptSRT5对乙酰化ptACSL1的脱乙酰化活性。以上表明AcP乙酰化的ptACSL1可以被三角褐指藻中SIRT脱乙酰酶家族的sirtuin蛋白ptSRT5逆转

通过构建ptACSL1ptSRT5全长开放阅读框的GFP融合体,发现ptACSL1ptSRT5都能定位在叶绿体中,推测ptACSL1可能通过可逆的Lys乙酰化和ptSRT5在叶绿体中的去乙酰化来调节

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